1 Produit chimique liquide
L’acide peroxyacétique, ou peracétique, a été le premier germicide utilisé pour stériliser les isolateurs et est toujours utilisé en raison de son efficacité, de son faible coût et de sa compatibilité avec la plupart des plastiques. Il est efficace à de faibles concentrations et températures, et, sous forme liquide, en présence de matière organique, bien qu’il ne pénètre pas les kystes de parasites et les œufs d’arthropodes (van der Gulden et van Erp, 1972). Il est disponible auprès des fournisseurs de produits chimiques de laboratoire sous forme de liquide contenant 40 % d’acide peracétique. Un avantage majeur de l’acide peracétique est qu’il est efficace en phase vapeur et liquide (Block, 2001 ; Trexler, 1984). La vapeur générée par la pulvérisation d’une solution à 1-2% à température ambiante inactive les bactéries et les spores de moisissures les plus résistantes en 15 minutes, et l’application directe du liquide permet d’obtenir la même action en 1 minute (Trexler, 1984). L’acide peracétique est parfois utilisé à une concentration de 4 %, mais rien ne prouve, d’après les applications gnotobiotiques réelles, que cette concentration soit plus efficace que 1 % (R. Orcutt, communication personnelle, mars 2014). L’activité sporicide optimale en phase vapeur est obtenue à 80 % d’humidité relative. La solution d’acide peracétique doit toujours être préparée immédiatement avant utilisation, car elle perd environ la moitié de sa force en 24 h. Un temps de contact de trente minutes est suffisant. L’acide peracétique est corrosif, et il est irritant pour les yeux, la peau et les voies respiratoires. Le personnel qui utilise l’acide peracétique doit porter des gants, des vêtements jetables et un masque complet avec des cartouches filtrantes chimiques. L’acide peracétique n’est pas considéré comme cancérigène par l’Agence de protection de l’environnement, l’Administration de la sécurité et de la santé au travail, ou le Programme national de toxicologie, et il n’est pas génotoxique ou mutagène (Malchesky, 2001), bien qu’il puisse être un promoteur de tumeurs.
La combinaison de l’acide peracétique avec le peroxyde d’hydrogène entraîne une activité antimicrobienne synergique (Block, 2001). Spor-Klenz™ (Steris Life Sciences), une solution stérilisante prête à l’emploi contenant 1 % de peroxyde d’hydrogène et 0,08 % d’acide peracétique, a une large efficacité sporicide et inactive complètement Mycobacterium spp. après 20 min de contact à 20°C (Rutala et al., 1991). Il est devenu un stérilisant accepté pour les gnotobiotiques. Un temps de contact de 1 h est recommandé. D’autres produits combinant l’acide peracétique et le peroxyde d’hydrogène sont disponibles, comme indiqué ci-dessous.
Le dioxyde de chlore sous forme liquide est maintenant le stérilisant le plus utilisé en gnotobiotique. Il est très efficace contre tous les micro-organismes et, comme l’acide peracétique, il est efficace à la fois en phase gazeuse et liquide (Jeng et Woodworth, 1990 ; Knapp et Battisti, 2001 ; Orcutt et al., 1981 ; Pell-Walpole et Waller, 1984). Il est 1075 fois plus sporicide à l’état gazeux que l’oxyde d’éthylène (Jeng et Woodworth, 1990). Les stérilisants liquides à base de dioxyde de chlore comprennent Exspor™ (Ecolab Inc.) et Clidox-S™ (Pharmacal Research Laboratories). Ces derniers sont composés de deux parties, une solution de base de chlorite de sodium et un activateur acide, qui sont combinés et mélangés avec de l’eau immédiatement avant l’application pour former une solution d’acide chloreux et de dioxyde de chlore. Un temps de contact d’au moins 30 minutes est recommandé. Ces produits peuvent corroder l’acier inoxydable.
Steriplex™ SD (sBioMed) est un produit en deux parties utilisant de l’argent, de l’acide peracétique et de l’éthanol (0,015 %, 0,15 % et 10 %, respectivement, dans le produit activé). Il est vendu comme un désinfectant, et non comme un stérilisant, pour les applications hospitalières et autres. Cependant, le fabricant affirme qu’il est sporicide, bactéricide, fongicide et viricide ; qu’il inactive rapidement les spores de Clostridium difficile et de Bacillus subtilis ; qu’il est non irritant ; et qu’il a une durée de conservation de 60 jours après activation (Robison, 2012 ; sBioMed, 2013a, b, c). Steriplex™ SD a commencé à être adopté pour une utilisation gnotobiotique (C. Bell, communication personnelle, janvier 2014). Dans nos tests, Steriplex™ SD a tué Geobacillus stearothermophilus 106 bandes de spores en 10 min et Bacillus atropheus 106 bandes en 30 min.
Les autres produits stérilisants liquides et désinfectants de » haut niveau » comprennent Actril™ (0.08% d’acide peracétique et 1,0% de peroxyde d’hydrogène ; Mar Cor Purification), Cidexplus™ 28-Day Solution (3,4% de glutaraldéhyde ; Johnson & Johnson), Minncare™ (4.5% d’acide peracétique et 22,0% de peroxyde d’hydrogène ; Minntech BV), PeridoxRTU™ (4,0-4,8% de peroxyde d’hydrogène et 0,17-0,29% d’acide peracétique ; Contec Inc.), Vimoba™ (dioxyde de chlore ; Quip Laboratories), Sanosil S010™ (5% de peroxyde d’hydrogène et 0.01% de nitrate d’argent ; Sanosil International), Sporgon™ (7,35% de peroxyde d’hydrogène et 0,23% de PAA ; Decon Laboratories), et Wavicide-01™ (2,65% de glutaraldéhyde ; Medical Chemical Corporation). Nous n’avons pas connaissance de rapports d’évaluation de l’un de ces produits pour une utilisation sur les gnotobiotiques.
Il existe un grand volume de littérature sur les tests des procédures de stérilisation et de désinfection liquides dans les soins de santé et la transformation des aliments ; malheureusement, cependant, il existe peu d’informations concernant l’efficacité comparative ou les tests standardisés appliqués directement aux gnotobiotiques. Les utilisateurs doivent savoir que les résultats des méthodes d’essai normalisées peuvent varier considérablement. Les organismes sur les surfaces sont presque toujours plus difficiles à tuer que ceux en suspension (Berube et al., 2001 ; Gibson et al., 1995 ; Sagripanti et Bonifacino, 1999, 2000 ; Springthorpe et Sattar, 2005 ; van Klingeren et al., 1998), et, dans les tests de surface, différents matériaux peuvent donner des résultats différents (Thorn et al., 2013). En outre, les résultats des tests standardisés n’indiquent pas nécessairement l’efficacité dans l’environnement dans lequel les stérilisants et les procédures seront réellement utilisés (Gibson et al., 1995 ; R. Orcutt, communication personnelle, mars 2014). Selon nous, l’utilisation de tests de laboratoire standardisés pour comparer des produits dont il est bien établi qu’ils sont des stérilisants efficaces lorsqu’ils sont correctement utilisés a beaucoup moins de valeur que de déterminer que les applications d’un stérilisant – c’est-à-dire les procédures dans lesquelles il est utilisé – sont efficaces et fiables. Les méthodes que nous utilisons sont décrites aux endroits appropriés de ce chapitre. Une dernière recommandation est que si l’on choisit de vérifier la stérilisation liquide, il est important de déterminer que la stérilisation est réelle et non simplement apparente en raison de l’inhibition de la croissance. Pour ce faire, on peut utiliser des techniques de dilution, des milieux neutralisants ou des combinaisons de ces méthodes. Le bouillon neutralisant de Dey-Engley fonctionne bien avec les stérilisants à base de dioxyde de chlore et d’acide peracétique (Espigares et al., 2003 ; Sutton et al., 2002 ; Terleckyj et Axler, 1987). Cependant, dans nos mains, il n’a pas neutralisé Steriplex SD™.
Il est conseillé au personnel de l’établissement nontobiotique de travailler avec le personnel de santé et de sécurité environnementale de son établissement concernant l’utilisation de stérilisants en aérosol. Une évaluation des risques professionnels doit être réalisée pour mettre en œuvre l’utilisation de l’équipement de protection individuelle approprié (respirateur chimique, gants, lunettes, écran facial, etc.) et des contrôles techniques tels que l’évacuation de l’air pour éloigner les vapeurs chimiques du personnel.